Endocrinologia, Diabetologia e Malattie del Metabolismo

Chi siamo

Responsabile scientifico: Prof.ssa Alessandra Dei Cas; alessandra.deicas@unipr.it – 0521 033307

Responsabile tecnico: Dott.ssa Valentina Spigoni valentina.spigoni@unipr.it – 0521 906681

Info e contatti: mail: valentina.spigoni@unipr.it tel: 0521 906681

Personale afferente:

•    Prof.ssa Barbara Altieri (professore Associato); barbara.altieri@unipr.it
•    Prof.ssa Federica Fantuzzi (Ricercatore); feedrica.fantuzzi@unipr.it – 0521 033314
•    Dott.ssa Anna D’Antuono (Assegnista di Ricerca); anna.dantuono@unipr.it – 0521 033314
•    Dott.ssa Francesca Bagnaresi (Dottoranda di Ricerca); francesca.bagnaresi@unipr.it – 0521 033314
•    Dott.ssa Elisabetta Giordano (Dottoranda di Ricerca); elisabetta.giordano@unipr.it – 0521 906681

Dove siamo

Presso l’Ospedale Maggiore di Parma, Padiglione 26 (ex Cinica Medica), piano rialzato (corridoio sulla destra)

Cosa facciamo

Principali linee di ricerca

Il Laboratorio di Endocrinologia, Diabetologia e Malattie del Metabolismo si occupa di studiare:
•    le basi ambientali, genetiche e fisiopatologiche del diabete mellito e delle condizioni ad esso associate (obesità, insulino-resistenza, disfunzione beta-cellulare);
•    le terapie farmacologiche innovative del diabete mellito;
•    la fisiopatologia e le basi molecolari dell’aterogenesi nel diabete mellito;
•    la (dis)funzione vascolare;
•    l’immunometabolismo
•    Basi molecolari dei carcinomi cortico-surrenalici e sviluppo di terapie farmacologiche innovative
•    Meccanismi patogenetici dell’ipersecrezione ormonale nei tumori surrenalici
•    Basi molecolari dell’ipercortisolismo

Metodologie applicate

•    Generazione di cellule staminali pluripotenti indotte (iPSC) da sangue periferico e loro differenziazione in cellule β pancreatiche;
•    Colture primarie di cellule umane, incluse cellule endoteliali (e progenitrici), monociti e macrofagi;
•    Linee cellulari di carcinomi cortico-surrenalico secernenti e non secernenti
•    Saggi di differenziazione e polarizzazione monocito-macrofagica;
•    Analisi fenotipiche (citofluorimetria) e funzionali (secrezione insulinica stimolata dal glucosio, saggi di migrazione, vitalità e apoptosi cellulare);
•    Analisi di espressione genica (qPCR) e proteica (ELISA, Western blot);
•    Immunofluorescenza e caratterizzazione del metabolismo cellulare mediante microcalorimetria;
•    Quantificazione di cellule endoteliali circolanti e progenitrici, e profiling immunologico delle sottopopolazioni monocitarie, dendritiche e linfocitarie mediante citofluorimetria;
•    Analisi trascrittomica (RNA-seq) di cellule circolanti (monociti e linfociti).

Principali strumentazioni in dotazione

•    Cappa a flusso laminare (per colture cellulari) e cappa chimica
•    Incubatori per colture cellulari
•    Microscopi ad inversione di fase
•    Frigorifero, freezer e ultrafreezer (-80°C)
•    Centrifuga e microcentrifuga
•    Bilancia analitica
•    PHmetro
•    Termociclatore per PCR real time
•    XFp Seahorse (dislocato presso la torre delle Medicine dell’Ospedale)
•    XFpro Seahorse (a 96 pozzetti) per lo studio del metabolismo cellulare
•    Cytation 1 (lettore di imaging cellulare e multi-modale di micropiastre)
•    Scanner per analisi microarray (dislocato presso Core Lab Pad. 15)
•    Fornetto ibridazione per microarray