Chi siamo
Dove siamo
Istituto di Anatomia Umana, Dipartimento di Medicina e Chirurgia, via Gramsci n. 14 traversa 3C - 1° piano (cod. SIPE 1004)
Cosa facciamo
Il Laboratorio di Anatomia Microscopica e Citometria a Flusso è uno spazio didattico dedicato allo studio della struttura e della funzione delle cellule e dei tessuti mediante tecniche di microscopia e analisi cellulare avanzata.
Attraverso attività pratiche guidate, gli studenti apprendono i principi dell’organizzazione tissutale e della biologia cellulare, sviluppando competenze utili per la comprensione dei meccanismi fisiologici e patologici e per l’interpretazione dei dati sperimentali in ambito biomedico.
Il laboratorio supporta la didattica pratica e i tirocini curriculari dei corsi di studio in Medicina e Chirurgia, Biotecnologie Mediche, Veterinarie e Farmaceutiche, Biotecnologie e Scienze Biomediche Traslazionali.
Le attività comprendono esercitazioni di anatomia microscopica, studio degli organi emolinfopoietici e analisi delle popolazioni cellulari mediante citometria a flusso. Gli studenti apprendono inoltre metodiche di coltura cellulare e differenziamento di cellule staminali, integrando l’osservazione morfologica con l’analisi funzionale.
Il laboratorio viene utilizzato anche per tirocini pratici e attività finalizzate alla preparazione di tesi sperimentali, consentendo un primo approccio alla ricerca biomedica.
Le esercitazioni si svolgono in piccoli gruppi sotto la guida di docenti e tutor e prevedono osservazione microscopica diretta, preparazione dei campioni e interpretazione dei risultati.
Le attività permettono di acquisire familiarità con le principali tecniche di laboratorio biomedico, tra cui:
• tecniche istochimiche e microscopia ottica e a fluorescenza
• citometria a flusso per l’identificazione di popolazioni cellulari
• colture cellulari in vitro e modulazione dell’espressione genica
• estrazione di DNA e RNA e tecniche di PCR
• western blot e analisi proteica
L’approccio pratico favorisce l’integrazione tra conoscenze morfologiche, funzionali e molecolari, sviluppando competenze utili per la pratica clinica e la ricerca sperimentale.
L’accesso al laboratorio avviene nell’ambito delle attività didattiche programmate dai corsi di insegnamento e dei tirocini curriculari.
Le sessioni sono organizzate in gruppi guidati dai docenti e dal personale tecnico.
Per lo svolgimento di tirocini individuali o attività di tesi sperimentale, l’accesso viene concordato con i docenti responsabili del laboratorio.
Tecniche in uso
• Tecniche istochimiche
• Microscopia ottica e a fluorescenza
• Citometria a flusso
• Colture cellulari in vitro e modulazione dell’espressione genica (siRNA, shRNA, DNA plasmidico)
• Estrazione acidi nucleici RNA e DNA
• PCR
• Western blot
• Isolamento di specifiche popolazioni cellulari da tessuti umani
Principali strumentazioni
• Citometro a flusso a 13 colori (CytoFLEX, Beckman Coulter)
• Microscopi ottici binoculari (YS100, Nikon): 18 postazioni single
• QuantStudio 1 real time instrument (Thermo Fischer Scientific)
• Nonadrop Ultra (Thermo Fisher)
• Chemidoc Imaging System (Biorad)
• Microscopio a fluorescenza (Eclipse 80i, Nikon)
• Cytospin (Thermo Fischer Scientific)
• Microtomo rotativo per microscopia ottica
• Ultramicrotomo
• Separatore cellulare (Automacs Pro, Miltenyi Biotec)
• Lettore di piastre Victor V3 multilabel counter (Perkin Elmer)
• Termociclatore per real time PCR (StepOne, Thermo Fischer Scientific)
• Ultracentrifuga (J20-XP, Beckman Coulter)
