Laboratorio di Oncologia Sperimentale

Responsabile scientifico: Prof. Per Giorgio Petronini

Responsabile tecnico: Dott.ssa Claudia Fumarola

Info e contatti: mail: piergiorgio.petronini@unipr.it tel: 0521 033767

Personale afferente:

• Petronini Pier Giorgio; piergiorgio.petronini@unipr.it; 0521 033767 (PO MED/04)
• Alfieri Roberta; roberta.alfieri@unipr.it; 0521 033768 (PA MED/04)
• Bonelli Mara; mara.bonelli@unipr.it; 0521 033766 (RUC MED/04)
• Cavazzoni Andrea; andrea.cavazzoni@unipr.it; 0521 033765 (RTDB MED/04)
• Fumarola Claudia; claudia.fumarola@unipr.it; 0521 033762 (Tecnico Cat D)
• La Monica Silvia; silvia.lamonica@unipr.it; 0521 033747 (Tecnico Cat C)
• Galetti Maricla; m.galetti@inail.it; 0521 033965 (Ricercatore INAIL)
• Digiacomo Graziana; graziana.digiacomo@unipr.it; 0521 033965 (Assegnista di ricerca MED/04)
• Volta Francesco; francesco.volta@unipr.it; 0521 033764 (Assegnista di ricerca MED/04)
• Terenziani Rita; rita.terenziani@unipr.it; 0521 033764 (Dottoranda)
• Zoppi Silvia; silvia.zoppi@unipr.it; 0521 033764 (Dottoranda)
• Eltayeb Kamal; kamal.eltayebelemammohamedahmed@unipr.it; 0521 033764 (Dottorando)

Plesso Biotecnologico Integrato, Palazzina D, 1° piano, via Volturno n. 39, 43125 Parma

Principali linee di ricerca

Ci occupiamo di Ricerca pre-clinica traslazionale in ambito oncologico, con aspetti di innovatività tecnologica-applicativa. La nostra ricerca mira a valutare l’efficacia di nuovi trattamenti terapeutici (terapie a bersaglio molecolare ed immunoterapia), con particolare interesse verso le terapie combinate, in vari tipi di tumori (carcinoma polmonare, renale, epatico, mammario, mesotelioma pleurico maligno). Un altro obiettivo delle nostre ricerche  è quello di individuare nuove strategie terapeutiche per il superamento di resistenze primarie ed acquisite a trattamenti farmacologici. La ricerca viene svolta su modelli in vitro di tumori umani, attraverso indagini di biologia cellulare e molecolare, e su modelli in vivo costituti da animali xeno-trapiantati.

Progetti di ricerca attualmente in corso:

PI Pier Giorgio Petronini

• “Studio SequENCe - Sequential Exposure to Tyrosine Kinase Inhibitors and Nivolumab in Renal Cell Carcinoma: from molecular patterns in cell lines to immunomodulating effects in murine models”, Novartis (in collaborazione con l’Oncologia Medica dell’Azienda Ospedaliero-Universitaria di Parma).
• “New therapeutic strategies for malignant pleural mesothelioma”, Associazione Augusto per la Vita, Novellara RE; Fondazione Cariparma; donazioni da privati cittadini.
• “New therapeutic strategies for hepatocarcinoma”, Associazione Noi per Loro, Parma.
• “AXIT study - Treatment sequence after AXitinib-based Immuno-Therapeutic combination in Renal Cell Carcinoma: searching for hints from preclinical settings” (in collaborazione con l’Oncologia Medica dell’Azienda Ospedaliero-Universitaria di Parma).

PI Roberta Alfieri

• “Preclinical evaluation of mechanisms of intrinsic resistance to osimertinib”, International Astrazeneca Global (in collaborazione con l’Oncologia Medica dell’Azienda Ospedaliero-Universitaria di Parma).

Responsabilità preclinica dei seguenti progetti

• “Beyond third-generation TKI in EGFR mutated NSCLC: resistance mechanisms, novel combinations and synthesis of new agents”, AIRC (PI Prof. M. Tiseo, Oncologia Medica, Azienda Ospedaliero-Universitaria di Parma).
• “Preclinical evaluation of the efficacy of Nintedanib after immunotherapy treatment in NSCLC”, Boehringer Ingelheim (PI Prof. M. Tiseo, Oncologia Medica, Azienda Ospedaliero-Universitaria di Parma).
•  “Study of PD-L1 and other immunotherapy efficacy predictors on cytology and circulating tumor cells in advanced NSCLC”, AIRC (PI Prof A. Ardizzoni, Oncologia Medica, Azienda Ospedaliero-Universitaria S.Orsola-Malpighi, Bologna).

Tecniche in uso

• Studi funzionali su cellule in coltura normali e neoplastiche di varia origine (saggi di proliferazione e vitalità cellulare; valutazione della morte cellulare; saggi di migrazione e invasione, crescita in soft agar; generazione di sferoidi e crescita in 3D)
• Saggi per la valutazione del processo angiogenico
• Separazione di cellule  e sistemi di co-colture  (interazione tra tipi cellulari diversi, es. cellule tumorali-linfociti)
• Tecniche di biologia molecolare (western blotting; RT-PCR; espressione e silenziamento genico mediante costrutti plasmidici o vettori lentivirali)
• Citometria a flusso
• Immunofluorescenza
• Impiego di traccianti radiomarcati per la valutazione del trasporto e la incorporazione di substrati
• Saggi biochimici e metabolici (saggi ELISA, saggi di attività enzimatica, dosaggi proteici)
• Utilizzo del Seahorse Bioscience XFp per la misura in realtime di parametri metabolici
• Isolamento di cellule tumorali da biopsie ed essudato pleurico e loro propagazione in vitro.
• Allestimento di xenotrapianti in modelli di topo immunocompromessi e immunocompetenti

Principali strumentazioni in dotazione

• Blot Scanner, Licor C-Digit®
• Contatore beta a scintillazione liquida, Packard Tricarb
• Contenitore Cryostorage 81 Lt, Taylor-Wharton 3000 RS Series
• Dissociatore per cellule e tessuti, Miltenyi Biotec Gentlemacs™
• Elettroporatore, Biorad Gene Pulser II Apparatus, Gene Pulser II Capacitance Extender Plus
• GeneAmp PCR System, Applied Biosystems 2700
• Incubatori a CO₂ e atmosfera controllata di O₂, Binder, CB150 e MMM Med Center MM500
• Microplate reader, Infinite M Nano con piastra nanoquant, Tecan
• Microscopio a Fluorescenza, Nikon Eclipse/E400, dotato di dispositivo Epifluorescenza, Nikon, e Camera Digitale Net -Camera control Unit, Nikon DN1000
• Real-Time PCR System, Applied Biosystems StepOne™
• Sonicatore + sonotrodo 0,5 mm., Hielscher UP50H
• Spettrofotometro ad assorbimento atomico, Varian
• Spettrofotometro UV/Vis, Beckman Coulter Du730 Life Science
• Strumentazione per elettroforesi di proteine e di acidi nucleici, Biorad
• Ultracentrifuga Preparativa, Beckman Optima L-60
• Ultra-Low Temperature Freezer, Panasonic