Laboratorio di Oncologia Sperimentale

•    Petronini Pier Giorgio; piergiorgio.petronini@unipr.it; 0521 033767 (PO MEDS-02/A)
•    Alfieri Roberta; roberta.alfieri@unipr.it; 0521 033768 (PA MEDS-02/A)
•    Bonelli Mara; mara.bonelli@unipr.it; 0521 033766 (PA MEDS-02/A)
•    Cavazzoni Andrea; andrea.cavazzoni@unipr.it; 0521 033765 (PA MEDS-02/A)
•    Fumarola Claudia; claudia.fumarola@unipr.it; 0521 033762 (Tecnico Cat D)
•    La Monica Silvia; silvia.lamonica@unipr.it; 0521 033747 (RTD-A MEDS-02/A)
•    Galetti Maricla; m.galetti@inail.it; 0521 033965 (Ricercatore INAIL)
•    Digiacomo Graziana; graziana.digiacomo@unipr.it; 0521 033965 (Borsista di ricerca MEDS-02/A)
•    Pagano Mariano Marco; marco.paganomariano2@unibo.it 0521033764 (Dottorando MEDS-02/A)
•    Falcone Emanuela; emanuela.falcone@unipr.it 0521 033764 (Dottoranda MEDS-02/A)
•    Blesio Andrea; andrea.blesio@unipr.it; 0521 033764 (Dottorando MEDS-02/A)

Per info e contatti: 
•    Responsabile scientifico: Prof. Pier Giorgio Petronini, piergiorgio.petronini@unipr.it; tel: 0521 033767
•    Responsabile tecnico: Dott.ssa Claudia Fumarola, claudia.fumarola@unipr.it; tel: 0521 033762 
        

Plesso Biotecnologico Integrato, Palazzina D, 1° piano, via Volturno n. 39, 43125 Parma
 

La nostra attività si concentra sulla ricerca pre-clinica traslazionale in oncologia, con innovazioni in tecnologie omiche e modelli 3D. Valutiamo l'efficacia di terapie a bersaglio molecolare e di tipo immunoterapico (es. checkpoint inhibitors), priorizzando combinazioni farmacologiche, in modelli di tumori solidi di carcinoma polmonare, mesotelioma pleurico maligno, sarcomi e tumori di origine sconosciuta (CUP). Un focus prioritario è l'individuazione di strategie per superare resistenze primarie/acquisite, tramite approcci omici (RNA-seq) validati mediante tecniche di biologia cellulare e molecolare. Gli studi integrano modelli in vitro (colture 2D, 3D in ambiente normossico ed ipossico) con analisi molecolari (qPCR, Western blot, flow cytometry) e modelli in vivo di xeno-trapianto (PDX murini).

Tecniche in uso

• Studi funzionali su cellule normali e neoplastiche di diversa origine istologica, inclusi saggi di proliferazione e vitalità cellulare, valutazione della morte cellulare, saggi di migrazione e invasione, crescita in soft agar e modelli di crescita tridimensionale (3D), inclusa la generazione di sferoidi. Analisi di vitalità cellulare mediante imamgini olografiche.
• Saggi in vitro per la valutazione del processo angiogenico.mediante saggi do co-coltura (cellule tumorali-endoteliali).
• Separazione cellulare e allestimento di sistemi di co-coltura per lo studio delle interazioni tra differenti tipi cellulari (es. cellule tumorali–linfociti).
• Tecniche di biologia molecolare: Western blotting, RT-PCR, modulazione dell’espressione genica mediante costrutti plasmidici e vettori lentivirali (over-espressione e silenziamento).
• Analisi citofluorimetriche mediante citometria a flusso.
• Tecniche di immunofluorescenza per l’analisi dell’espressione e della localizzazione proteica.
• Impiego di traccianti radiomarcati per lo studio del trasporto e dell’incorporazione di substrati cellulari.
• Saggi biochimici e metabolici (ELISA, saggi di attività enzimatica, dosaggi proteici).
• Utilizzo del sistema Seahorse Bioscience XFp per la misurazione in tempo reale dei parametri metabolici cellulari.
• Isolamento di cellule tumorali da biopsie solide ed essudato pleurico e loro propagazione in coltura in vitro.
• Allestimento e gestione di modelli di xenotrapianto in topo, sia immunocompromesso sia immunocompetente.

Principali strumentazioni in dotazione

• Blot Scanner, Licor C-Digit®
• Contatore beta a scintillazione liquida, Packard Tricarb
• Dissociatore per cellule e tessuti, Miltenyi Biotec Gentlemacs™
• Elettroporatore, Biorad Gene Pulser II Apparatus, Gene Pulser II Capacitance Extender Plus
• GeneAmp PCR System, Applied Biosystems 2700
• Microplate reader, Infinite M Nano con piastra nanoquant, Tecan
• Microscopio a Fluorescenza, Nikon Eclipse/E400, dotato di dispositivo Epifluorescenza, Nikon, e Camera Digitale Net -Camera control Unit, Nikon DN1000
• Real-Time PCR System, Applied Biosystems StepOne™
• Spettrofotometro UV/Vis, Beckman Coulter Du730 Life Science
• Hypoxic workstation
• Holomonitor ™ Live Cell Imaging System 

Progetti di ricerca attualmente in corso

• New PET radioligands for assessing response during progression to osimertinib treatment in NSCLC models
• Ricerca preclinica per l’ottimizzazione di terapie a bersaglio molecolare nel mesotelioma pleurico maligno
• Valutazione dell’efficacia della combinazione dell’inibitore CDK4/6 abemaciclib con terapie anti-angiogeniche in modelli preclinici di sarcoma di Ewing
• Impact of KRAS non-G12C mutations on tumor VAsculature in Non-Small Cell Lung Cancer cells: rationale and STRAtegies for combined targeted inhibition of KRAS signaling and tumor angiogenesis (RAVASTRA)
• Study on the effect of KRASG12D and KRASG12V mutations on transcriptional profiling in human lung carcinoma cells by Nanopore direct RNA sequencing molecular approach
• Dissecting the Impact of Orphan Genomic Alterations (OGAs) in advanced Non-Small Cell Lung Cancer (NSCLC)
• Ruolo dell’inquinamento ambientale nel processo di cancerogenesi polmonare